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Triton X-100细胞裂解液

¥268.00
R1672

用途温和裂解细胞提取总蛋白质,主要用于Western,免疫沉淀,免疫共沉淀等,非变性组织细胞裂解液
注意事项:主要由Triton X-100、氯化钠、Tris组成,Triton X-100为最常用的去污剂之一。含有一支1.5ml PMSF。用本裂解液得到的蛋白样品,可以用BCA蛋白定量试剂盒测定蛋白浓度。由于含有较高浓度的去垢剂,不能用Bradford法测定由本裂解液裂解得到样品的蛋白浓度。
储存条件和保质期—20℃,12个月

()贴壁培养细胞

1、取 Triton X-100 Lysi s Buffer 室温溶解混匀,加入 PMSF,使 PMSF 终浓度为 1mM。

2、去培养液,用PBS、NS或无血清培养液清洗 1 次,低速离心,弃上清,留取沉淀。

3、按照6孔板每孔加入150~250μl含有PMSF 的裂解液的比例加入Triton X-100 Ly sis

Buffer。移液器轻轻吹打,使裂解液和细胞充分接触。置于冰上或 4℃裂解,通常裂解液作用于细胞1~3s内,细胞就会被裂解。通常6孔板每孔细胞加入150μl 裂解液已经足够,但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到 200~250μl。

4、10000~12000g,4℃离心5~10min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。

5、进行后续的 SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

()悬浮培养细胞

1、取Triton X-100 Lysi s Buffer 室温溶解混匀,加入PMSF,使PMSF终浓度为1mM。

2、低速离心悬浮细胞,弃上清,收集沉淀。

3、用手指轻弹细胞,使其松散。按照6孔板每孔细胞加入150~250μl 含有PMSF的裂解液的比例,加入Leagene Triton X-100 Lysi s Buffer。通常6孔板每孔细胞加入150μl裂解液已经足够,但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到200~250μl。再用手指轻弹以充分裂解细胞,充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。

4、10000~12000g, 4℃离心5~10min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。

5、进行后续的 SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

  • 组织样本

1、取TritonX-100LysisBuffer室温溶解混匀后,加入PMSF,使PMSF终浓度为1mM。

2、把组织剪切成细小的碎片,越小越好。

3、取在液氮或超低温冰箱中冷冻30min以上的组织,迅速用液氮研磨,研磨过程尽量控制在1~2min之内,以减少蛋白的降解。

4、按照每20mg组织加入150~250μl裂解液的比例加入含有PMSF的裂解液。冰上或4℃裂解15~30min。

5、步骤3、4亦可以采用如下过程:按照每20mg组织加入150~250μl裂解液的比例加入含有PMSF的TritonX-100LysisBuffer。用玻璃匀浆器或组织研磨器匀浆,直至充分裂解,该过程尽量控制在1~2min之内,以减少蛋白的降解。

6、10000~12000g,4℃离心5~10min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。

7、进行后续的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。

象形图
警示语
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UNub
危险声明
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